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AA粉剂中AA含量的检测方法

时间:2005/1/1 1:01:00 来源:网友

1. 总脂肪含量的测定
1.1试剂
所有试剂,如未注明规格,均指分析纯;所有实验用水,如未注明其他要求,均指三级水。
1.1.1高峰氏淀粉酶(Taka-Diastase)
1.1. 2氨溶液:质量分数约为25%,
1.2. 1.1.3 乙醇:体积分数至少为94%
1.1.4乙醚:不含过氧化物,不含抗氧化剂,或抗氧化剂含量不大于2mg/kg。
1.1.5 石油醚:沸程30—60℃。
1.1.6 混合溶剂:等体积混合乙醚和石油醚,使用前制备。
1.2 仪器
由于测定中就是用了挥发性可燃溶剂,所有电器的使用均应按照这些溶剂使用的有关规定进行。
常用实验室仪器及:
1.2.1 分析天平。精确至0.001g
1.2.2 蒸馏器或蒸发器:可在不超过100℃情况下,蒸馏除掉脂肪收集瓶中的溶剂和乙醇。
1.2.3 烘箱:电热的,通风口完全打开,工作区域温度可控制在102℃±2℃。配有适当的温度计。
1.2.4 水浴锅:温度可控制在65℃±5℃
1.2.5 100ml的具塞试管。
1.2.6 支架:放置具塞试管。
1.2.7 脂肪收集瓶:例如:容量为125-250mL可加热烧瓶(平底烧瓶),250mL锥形瓶。
1.2.8 量筒:5mL和25mL.
1.2.9 吸量管:带刻度的,10mL
1.2.10 金属夹钳:用于夹烧瓶,烧瓶。
1.3操作步骤
1.3.1准确称取样品约1.0000g,置100ml具塞试管中,加0.1gTaka淀粉酶,再加入10ml45~50℃的蒸馏水,混合均匀后,用氮气排除空气,盖上瓶塞,置45℃烘箱内30min,取出冷却室温。
1.3.2 于上述样品液中加入2ml体积分数为25%的氨水,置于65℃水浴中15℃min,取出,轻摇,冷至室温。
1.3.3 加入10ml乙醇,混匀。加入25ml乙醚,塞上塞子振摇1min。加入25ml石油醚,塞上塞子振摇1min。再加入25ml石油醚,塞上塞子振摇1min。离心或静止,使醚层、水层分开。有机层转入烧瓶中。第二次提取加入的试剂为5ml乙醇、15ml乙醚、15ml石油醚,操作同前。第三次提取不加乙醇,只用15ml乙醚、15ml石油醚,如上操作。
1.3.4采用蒸馏的方法除去收集瓶中的溶剂(包括乙醇),对烧杯或皿可用蒸发来除掉溶剂。1.3.5 将脂肪收集瓶放入102±2℃的烘箱中加热1h,取出收集瓶,冷却至天平室的温度(不要放入干燥器中,但要防尘,玻璃容器冷却至少1h,金属容器冷却至少0.5h)。称量,精确至0.1mg。称量前不要擦收集瓶。用夹钳将收集瓶放到天平上(避免温度变化)。
1.4分析结果表述
m1-m2
样品中脂肪含量X(g/100g)= ×100
m0
式中:m0-----样品的质量,g
m1-----测得的脂肪收集瓶和抽提物的质量,g
m2-----脂肪收集瓶的质量, g
报告质量分数结果精确至0.01%。
2相对含量的测定
2.1试剂
2.1.1正己烷:色谱纯
2.1.2 氢氧化钾的甲醇溶液:C(KOH)为4mol/L,使用无水甲醇
2.1.3花生四烯酸甲酯标准品(99%含量)
2.1.4其余参见1.1
2.2仪器 参见1.2及
2.2.1气相色谱仪(氢火焰检测器FID)
2.2.2毛细管色谱柱 SPB-5
2.3操作步骤
2.3.1参见1.3.1-1.3.5
2.3.2把提取的醚液合并,减压浓缩至近干,用正己烷溶解残留物并定容至10mL,摇匀。准确吸取2mL此液于10mL带盖离心管中,加入1mL氢氧化钾的甲醇溶液,振摇1min以上,放置10min(甲基化反应)。如果有机层混浊,可离心使之澄清。此有机层即为样品待测液。
2.4 测定
2.4.1测定条件
a) 进样器温度:250℃;
b) 检测器FID温度:250℃;
c) 进样体积: 1μl;
d)灵敏度:10-1
e)衰减:102;
f)分流比100:1
g)氮气流速:25mL/min;氢气流速25 mL/min ;空气流速300mL/min;
h)柱温:程序升温160℃保持1min再每10℃/min升温到230℃保持6min再每6℃/min
升温到240℃保持1min再每6℃/min升温到250℃保持30min。
2.4.2定性测定
根据保留时间定性。改变色谱条件,如柱温度、载气流速,使标准组分AA的保留时间发生改变。如果样品中的某个峰随标准品中的某个峰的保留时间有同样的改变,即证明样品中含有AA。
2.4.3定量测定
外标定量法。
注射一定体积的样品待测液进入色谱仪,得到样品中AA的含量。
3.1 分析结果的表述
花生四烯酸(AA)含量A(%)以粉末油脂中AA绝对含量的百分数表示,按下式计算:
A(%)= X1 *X*100
100-X2
式中: x1 — 样品中花生四烯酸峰所占比例
x2 — 样品中溶剂峰所占比例
X— 样品中脂肪含量

二.过氧化值的测定
1所用试剂及仪器
1.1 饱和碘化钾溶液;
1.2三氯甲烷—冰乙酸混合液:二者为2:3
1.3 硫代硫酸钠标准滴定溶液:0.002mol/L
1.4 淀粉指示剂
1.5 250ml碘量瓶
1.6 酸式滴定管
2测定方法
精密称取2~3g样品,置于250ml碘量瓶中,加30ml三氯甲烷—冰乙酸混合液,使样品完全溶解,加入1.00ml饱和碘化钾溶液,紧密塞好瓶盖,轻振0.5min,在暗处放置3min,取出加50ml水,摇匀,立即用硫代硫酸钠标准溶液滴定至淡黄色时,加1ml淀粉指示剂,继续滴定至蓝色消失为终点,取相同量三氯甲烷—冰乙酸溶液,碘化钾溶液,水按同一方法做试剂空白试验。
3计算
X=(V1—V2)*C*1000
m
式中:X—样品的过氧化值,meq/kg;
V1—样品消耗硫代硫酸钠标液体积,ml;
V2—空白消耗硫代硫酸钠标液体积,ml;
m—样品质量,g

三.灰分的测定
1.试剂
乙酸镁乙醇溶液: 15g乙酸镁溶于100ml体积分数为95%的乙醇中
2测定方法
2.1坩埚处理。
将坩埚编号后在800~8500C温度下灼烧30min(坩埚盖一并放入),取出置于干燥器中,冷却称量。
2.2测定
用坩埚(加盖)称取粉碎试样2~3g,加入乙酸镁乙醇溶液3ml,盖严静置2~3min,用乙醇棉点燃,待火焰熄灭后,放在电炉上错开坩盖,加热至试样完全炭化(无烟)为止,将坩埚送到高温炉膛口预热片刻,再移入炉膛内,错开盖,关闭炉门,在800~8500C灼烧1h,待剩余物变成浅灰白色或白色时,停止灼烧,取出坩埚置于炉门处,待红热消失后,移入干燥器内,冷却至室温,称量。
3.空白实验
在质量一定的坩埚中加入乙酸镁乙醇溶液3ml,用乙醇棉点烧并炭化,灼烧等同上。
4.计算: W灰=(m1—m0)—(m3—m2) * 100%
m(1—W)


W灰 ——灰分(干基)的质量百分数;
m2 ——空白实验坩埚质量,g
m0 ——坩埚质量,g
m1 ——灰分和坩埚质量,g
m3 ——氧化镁和坩埚质量,g
m ——试样质量,g
W ——试样水分的质量分数
5.注意事项
1. 炭化时一定要小火慢慢进行,只让发烟不让起火,以免被火焰带走试样中的灰分而影响测定结果。
2. 炭化时若发生膨胀,可滴数滴橄榄油。
3. 如果测定灰分时,仍然使用前次的乙酸镁乙醇溶液,可以略去空白试验,采用前次的
氧化镁的质量来计算。
四.水分的测定
1.仪器
1.1电热恒温箱
1.2分析天平
1.3有变色硅胶的干燥器
1.4称量瓶
2.方法
取干净的空称量瓶,将盖打开,一并放入烘箱内,烘30min至1h取出,冷却,称量(加盖)。再烘30min,烘到前后两次质量差不超过0。005g,即为质量恒定。
用烘至恒重的称量瓶称取试样约3g,放入烘箱内,1050C下烘2h后取出,置于干燥器内冷却至室温,称量。再按上述方法进行复烘,每隔30min取出称量一次,烘到前后两次质量差不超过0。005g为止。如后一次质量高于前一次质量,以前一次质量计算。
3.计算:
W水 = m1—m2 ×100%
m1—m0
式中:W水 ——水分质量分数,%
m0 ——称量瓶质量,g
m1 ——烘前称量瓶和试样质量,g
m2 ——烘后称量瓶和试样质量,g


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